TAE=Tris base + acetic acid + EDTA
TBE=Tris base + boric acid + EDTA
TBE/TAE buffers are often used in procedures involving D/RNAs.
Tris-acid solutions are effective buffers to keep DNA deprotonated and soluble in water. EDTA is a chelator of divalent cations, which protects the nucleic acids against enzymatic degradation。
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BioEngX翻译时间：我们在进行DNA电泳时都会加入缓冲溶液，常用的缓冲溶液有TAE（ 三羟基氨基甲烷+乙酸+EDTA），或者TBE（三羟基氨基甲烷+硼酸+EDTA ）。想知道EDTA中文名字的看这里：乙二胺四乙酸。
缓冲液的作用之一是维持溶液的pH稳定。 电流通过水(H2O)时，在阳极发生氧化反应，生成氧气以及氢离子；在阴极发生还原反应，生成氢气以及氢氧根离子。长时间电泳将会使阳极变酸，阴极变碱。一个好的缓冲系统应该有较强的缓冲能力，使溶液两极的pH保持基本稳定。
电泳缓冲液的另一个作用是使溶液带有一定的导电性，以利于DNA分子的迁移。 DNA为碱性物质，在电泳（缓冲液pH=8）时带负电荷，由负极向正极迁移。
电泳缓冲液还有一个组分是EDTA，目的是螯合Mg2+等离子，防止电泳时激活DNA酶。由于核酸酶需要这些离子，EDTA可以将这些离子牢牢抓住，避免核酸降解。但要注意的是，镁离子同时是很多酵素的辅助因子，如限制酶、DNA聚合酶等等，因此EDTA的浓度一般不会太高（通常在1mM左右）。
DNA电泳时应该用哪个？这其实取决于你的实验目的。下面我们来看看二者的区别[1]
TBE的电导率大于TAE的电导率。因此相比于TAE，TBE不太会导致电泳槽内过热的情况发生，长时间电泳推荐使用TBE。
硼酸是酶的抑制剂，因此如果你需要分离电泳的DNA用于酶切反应，建议使用TAE作为电泳缓冲溶液。
TBE对于较小片段的分离效果更好。对于小于300bp的片段，在2%的琼脂糖凝胶上，TBE中的迁移速度更快。
TAE适用于大片段的分离，大于2kb的片段在TAE中的迁移速度更快（0.8%的琼脂糖凝胶中），速度比在TBE中快出约10%
TAE更适用于回收DNA片段。
相比于TBE，TAE对于超螺旋的DNA分辨率更高[2]
在本文的最后，我们列出TAE与TBE的配方以及配配制方法，供大家查询使用[3]。
TAE缓冲液
实验之中经常将TAE配制成10× 或者 50× 的储液，实验前稀释储液到1×的工作液。
TBE缓冲液
TBE缓冲液可以配置成 5× 或者 10×的储液。
1x TBE 缓冲液的成分是：
89 mM Tris (pH 7.6)
89 mM boric acid
2 mM EDTA
[1] 三浦裕, 和気弘明, 加藤泰治. TBE, or not TBE; that is the question: Beneficial usage of tris-borate for obtaining a higher resolution of small DNA fragments by agarose gel electrophoresis[J]. Nagoya medical journal, 1999, 43(1): 1-6.
[2] Dingman C W, Peacock A C. Analytical studies on nuclear ribonucleic acid using polyacrylamide gel electrophoresis[J]. Biochemistry, 1968, 7(2): 659-668.
[3] http://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/lsr/literature/Bulletin_6205.pdf
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