免疫原性临床前DMPK生物分析策略

治疗性蛋白药物引起的机体免疫反应包括天然免疫和适应性免疫。天然免疫是生物体非特异性、无记忆性的病原体防御功能，用以抵御病原体入侵的第一道防线，特定的药物类型在特殊病人群体也可能诱导天然免疫系统的响应。而我们一般讨论与监测的更多是治疗性蛋白药物的适应性免疫反应。适应性免疫包括细胞免疫介导的细胞因子释放作用和体液免疫介导的抗药抗体的产生。

体液免疫主要通过B细胞产生的针对治疗性蛋白的抗药抗体来发挥作用。抗药抗体不仅包括结合药物的抗体，也可以是阻断其功能的中和抗体。如图1所示，根据产生机制通常可分为T细胞依赖途径和非T细胞依赖两种机制。实际上，由于免疫复合物或者聚集物都能够从不同程度上激活这两种途径，并且两种途径均会产生ADA，使得这两种机制并无明显区别，它们会相互作用并增加对方的作用强度。

图1. 抗药抗体的产生机制^[2]

ADA的产生最初与第一批上市抗体含有大量的小鼠序列有关。它们被人体免疫系统识别为异物是免疫原性出现的关键步骤。为了解决该问题，生物工程的进步产生了嵌合(鼠-人)抗体、人源化抗体和全人源抗体^[3]。然而，尽管免疫原性降低，但并没有完全消除。免疫原性的产生是由多因素共同作用的结果，可以分为与患者相关的因素（患者的免疫力状态和免疫能力、遗传因素、预存抗体、给药途径、剂量和频率）和与药物相关的因素（产品的来源、结构、聚合物的形成、糖基化、聚乙二醇化、杂质、处方、包装和储存等）。美国药典通则1106对这些影响因素进行整理归纳，主要可以分为低、中、高风险3个方面。

表1. 影响免疫原性产生的因素^[4]

ADA 会对药物暴露、药物代谢动力学特征、药效、药物毒性作用等造成影响。ADA与药物结合，可能会增加或减少药物的清除、影响半衰期和组织分布、改变药物的暴露水平和药代动力学特征、影响对药物毒性作用的评价及对临床研究中起始剂量的评估；中和抗体会中和药物的活性、降低药物的药效作用；ADA与药物及相似内源性蛋白（具备相似表位）结合后，可能会导致该蛋白缺陷综合征，引起相应毒性作用；对药物的免疫应答可能会导致过敏反应、自身免疫等，ADA-药物免疫复合物沉积可能引起免疫病理变化和相关不良反应^[5]。

对于ADA的检测，NMPA、FDA、EMA的指导原则均从免疫原性的检测流程维度分为筛选、确证和表征3个阶段。如图2所示，首先对所有样品进行筛选试验，其次对阳性样品的特异性进行确证试验，对已确定的阳性样品进行滴度试验，以及通过功能性试验对抗体中和活性进行检测。其中在已确定的阳性样品中，还应考虑确定抗体同种型、亚型和结合表位的检测。3个指导原则对于方法学验证的参数基本相同，但NMPA和FDA的指导原则给出了更加具体的要求和做法，而EMA相对宽泛。ADA检测的方法学验证内容通常包括筛选临界值、确证临界值、分析方法灵敏度、精密度、选择性、药物耐受性、特异性、稳健性、重现性及稳定性等，表2总结了3种指导原则需要的验证参数。

图2. ADA检测的分级评估策略^[1]

表2. 3种指导原则验证参数的比较汇总^[6-8]

注：+：有相关参数 -：无提及

对于细胞因子释放试验，EMA并未要求，FDA也仅是简单提及，而NMPA首次将体外细胞因子试验提到法规层面，对体外细胞因子试验的策略、基本观察指标做了要求：基于细胞因子释放机制，设计合适的体外细胞因子释放试验，如果药物直接靶向免疫细胞，可采用外周血单个核细胞进行试验，如果机制可能与FcγRs结合相关，则更适合在包含表达FcγRs细胞的全血中进行试验，观察指标包括但不限于IL-2、IL-6、IL-10、IFN-γ和TNF-α^[1][6][7][8]。

由于免疫原性会严重影响药物的有效性和安全性，药监部门要求所有治疗性蛋白药物都要进行免疫原性检测，FDA对其给出的具体要求是高灵敏度、高特异性、高稳定性及高亲和力。而ADA的检测和确认比较复杂，检测结果会受到所使用的分析方法的影响。包括酶联免疫法（ELISA）、电化学发光法（ECL）、放射免疫沉淀法（RIPA）和表面等离子体共振法（SPR）。根据表3所列出的各平台分析方法的优缺点，可以挑选出合适的分析平台，规避可能出现的问题。

表3. 各免疫原性分析平台优缺点对比

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另外，FDA在2018年统计了当时近五年的申报方法，其中ADA的检测以ECL和ELISA平台为主，中和抗体检测以细胞实验和竞争配体结合实验平台为主。在检测形式上又分为直接法和桥接法。

图3. ELISA直接法示意图

图4. ECL桥接法示意图

在内部验证试验中，采用ECL桥接法检测了曲妥珠单抗给药后大鼠体内产生的抗药抗体。该方法对筛选临界值、确证临界值、分析方法灵敏度、耐药性、精密度、选择性、稳定性等参数进行了确证。其中灵敏度可做到0.382 ng/mL，耐药性可做到阳性对照为500 ng/mL时可耐受200 μg/mL。

实验入组共6只大鼠，采用交叉取点的方式，采集了8个时间点，共24个样本。首先通过筛选试验确认了8个样本为阳性，再通过确证实验确定4个样本为假阳性，最后通过titer实验来表征抗体的相对含量，结果显示这4个样本滴度从10200-68000不等。

表4. 曲妥珠单抗给药后大鼠体内试验结果汇总

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注：/：未进行该实验

作为评估方法学性能的关键试剂，阳性对照抗体直接影响检测方法的灵敏度和药物耐受水平。选择合适的阳性对照抗体，对抗药抗体检测方法学的开发和验证至关重要。一般选择免疫动物制备多克隆抗体作为阳性对照抗体。

治疗性蛋白药物由于给药剂量大、半衰期长，循环中的高浓度药物给免疫原性的评估带来了很大挑战。ADA检测会受到样品基质中药物的干扰，过量的药物与 ADA 结合，会造成 ADA 检测假阴性结果。目前在ADA分析中，有多种方法可以用来提高药物耐受性，减少或避免由于游离药物的存在而造成的假阴性结果，防止对ADA的低估。由于ADA在样品中会有两种存在形式，即游离ADA和ADA-药物复合物^[9]。为了减少在ADA检测过程中受到的各种干扰，需要对样品进行前处理，应该考虑每种药物的特点、检测目的、风险评估、灵敏度目标、操作难易程度及可行性等，选择适用的分析方法。如表5所示，我们对比了不同处理方法对药物耐受性的影响。

表5. 不同处理方法药物耐受性对比

另外，对于单抗药物，可溶性靶标的干扰也是一个具有挑战性的问题。可溶性的二聚体或多聚体药物靶标可以在两个标记药物分子之间形成桥梁，容易导致ADA假阳性结果。而当只能与其中一种抗体结合时，又会造成空间位阻，导致假阴性结果的产生。目前通常采用的解决方法是将基质中的可溶性靶点进行清除，通常可以用靶点抑制剂（一般为相应的抗靶点抗体）去结合靶点，可去除靶点的干扰作用，提高靶点耐受性^[10]。

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作者：宋苗苗，刘洁，周毛天，邢丽丽

编辑：富罗娜·克里木，钱卉娟

设计：倪德伟，张莹莹