摘
要:目的
研究蝙蝠葛碱对肝癌
Huh7
细胞增殖和凋亡的作用,探索其抗肿瘤的作用机制和与
Hedgehog
信号通路的关系。
方法
不同质量浓度(
2
、
4
、
8 μg/mL
)的蝙蝠葛碱处理
Huh7
细胞
,采用四甲基偶氮唑蓝(
MTT
)法检测
Huh7
细胞增殖能力的变化;流式细胞术分析细胞凋亡;
real-time PCR
、
Western blotting
法检测
Hedgehog
信号通路相关基因及蛋白表达水平。
结果
随着蝙蝠葛碱质量浓度及作用时间的增加,其对
Huh7
细胞增殖的抑制率升高。其中蝙蝠葛碱
8 μg/mL
作用
48 h
对细胞增殖抑制率最高(
48.8%
)。蝙蝠葛碱可明显诱导
Huh7
细胞发生凋亡。随着蝙蝠葛碱质量浓度的增大,细胞的凋亡率显著升高(
P
<
0.05
、
0.01
)。与对照组比较,蝙蝠葛碱各质量浓度组细胞
Hedgehog
信号通路中
PTCH1
、
GLi1
、
SMO
、
SHH mRNA
和蛋白表达水平显著降低,同时
cleaved Caspase-3
蛋白水平显著升高,而
Bcl-2
表达水平降低(
P
<
0.05
、
0.01
),并
呈质量浓度依赖性。
结论
蝙蝠葛碱可明显抑制
Huh7
细胞的增殖,促进其凋亡,其可能通过抑制
Hedgehog
信号通路发挥作用。
蝙蝠葛碱(
dauricine
,
DC
)又名北豆根碱,是从防己科植物蝙蝠葛
Menispermum dauricum
DC.
的干燥根茎中提取的苄基四氢异喹啉类生物碱,气味微苦,临床用于治疗扁桃体炎、咽喉肿痛、牙龈肿痛等
[1]
。北豆根的主要药用成分为生物碱,总碱含量在
1%
以上,其中含量最高的为
DC
[2]
。
DC
具
有明确的抑菌抗炎作用,近年来还发现其具有抗心律失常、抗氧化损伤和抗肿瘤作用
[3-6]
。
原发性肝癌是全球导致死亡的第
2
大肿瘤,其中
70%
~
85%
为肝细胞肝癌(
hepatocellular carcinoma
,
HCC
)
[7-8]
。肝癌的发生和演进是一个多阶段、多系统、多基因参与的复杂过程,选择性阻断肿瘤细胞信号传导通路,破坏其自控性生长调节机制为肿瘤研究领域的热点
[9]
。
Hedgehog
信号通路在果蝇中首次被发现,并已证明从果蝇到人类普遍存在
[10]
。其在多种生理过程如哺乳动物胚胎发育、组织分化及肿瘤形成等过程中都发挥关键作用
[11]
。
Hedgehog
通路由
Hedgehog
配体、
2
个跨膜蛋白受体
Ptched
(
Ptch
)和跨膜蛋白
Smoothened
(
SMO
)以及核转录因子
GLi
蛋白等组成,因此
SHH
、
PTCH1
、
GLi1
和
SMO
基因及蛋白的表达水平是反映
Hedgehog
信号通路活性的可靠
指标
[12]
。近几年的研究表明,在多种恶性肿瘤中都存在着
Hedgehog
信号通路的异常激活,如肝癌、肺癌、甲状腺癌、前列腺癌、胃癌等,提示
Hedgehog
信号通路在肿瘤发生、发展过程中起到重要作用
[13-17]
。
本实验采用不同质量浓度的
DC
处理肝癌
Huh7
细胞,研究其对
Huh7
细胞增殖、凋亡的影响,并研究
DC
是否通过
Hedgehog
信号通路发挥作用,为肝癌的治疗提供相应的理论依据。
1
材料
1.1
细胞株
Huh7
细胞由郑州大学第一附属医院肝病中心实验室液氮冻存。
1.2
药品与试剂
DC
购自上海融禾医药公司(批号
BR-06272,
质量分数
>
99.2%
,
Sigma-Aldrich
公司);胎牛血清购自
Gibico
公司;
RPMI 1640
培养基由
Hyclone
公司生产;四甲基偶氮唑蓝(
MTT
)购自碧云天公司;
Annexin V-FITC/PI
凋亡试剂盒购自
Becton Dickinson
公司;二甲基亚砜(
DMSO
)和总
RNA
抽提试剂
Trizol
购自
Invitrogen
公司;逆转录试剂盒、
BCA
蛋白定量试剂盒购自
Thermo Fisher
公司;
Real-time PCR
定量
mix
购自
Roche
公司;聚偏二氟乙烯膜(
PVDF
)购自
Millipore
公司;兔抗人
β-actin
多克隆抗体购自
Santa Cruz
公司;兔抗人
PTCH1
、
GLi1
、
SMO
多克隆抗体购自
Sigma-Aldrich
公司;兔抗人
cleaved Caspase-3
多克隆抗体购自
Cell Signal Technology
公司;鼠抗人
Caspase-3
、
Bcl-2
单克隆抗体购自
Abcam
公司;羊抗兔和羊抗鼠二抗为北京中山金桥公司生产。
1.3
仪器
CO
2
培养箱购自
Thermo Fisher
公司;流式细胞
仪购自美国
BD
公司;酶标仪购自
Bio-Rad
公司,
Real-time PCR
仪购自
Roche
公司;
GEImage Quant LAS 4000 mini
超灵敏化学发光成像仪购自
GE
公司。
2
方法
2.1
细胞培养和药物配制
Huh7
细胞用含
10%
胎牛血清的
RPMI 1640
培养基,在
5% CO
2
、
37
℃
、饱和湿度的培养箱培养,
0.25%
胰酶消化传代,
2
~
3 d
传代
1
次。实验采用对数生长期细胞。
DC
干粉以
DMSO
溶解配制成
8 mg/mL
的储存液,并分装冻存于
−20
℃
,使用时以培养基稀释至所需质量浓度。
2.2
MTT
实验检测细胞增殖
Huh7
细胞接种于
96
孔板(
8
×
10
3
个
/
孔),过夜培养后分为对照组和
DC
低(
2 μg/mL
)、中(
4 μg/mL
)、高(
8 μg/mL
)质量浓度组,每组
6
个复孔,各组分别加入
DMSO
和相应质量浓度的
DC
。于培养
24
、
48
、
72 h
分别加入
MTT
溶液
20 μL
(
5 mg/mL
)继续培养
4 h
。弃去上清,每孔加入
150 μL DMSO
,避光震荡
10 min
摇匀。使用
Bio-Rad
酶标仪于
490 nm
波长测定各孔吸光度(
A
)值,计算细胞增殖抑制率。
增殖抑制率=
1
-
A
给药
/
A
对照
2.3
流式细胞术检测细胞凋亡
于
6
孔板中接种
Huh7
细胞(
5
×
10
6
个
/
孔),分组同“
2.2
”项下,每组加入
DMSO
和相应质量浓度的
DC
。
48 h
后收集细胞,按照
Annexin V-FITC/PI
试剂盒说明,使用流式细胞仪检测细胞凋亡率。
2.4
Real-time
PCR
检测相关基因表达水平
Real-time PCR
检测
PTCH1
、
GLi1
、
SMO
、
SHH
、
mRNA
表达。于
12
孔板中接种
Huh7
细胞(
2
×
10
6
个
/
孔),分组同“
2.2
”项下,每组
3
个复孔,各组分别加入
DMSO
和相应质量浓度的
DC
。处理
24h
后弃去上清,每孔加入
0.5 mL Trizol
处理细胞,提取总
RNA
,逆转录成
cDNA
,以
cDNA
为模板,使用含
SYBR Green
定量试剂盒进行
real- time PCR
反应。反应参数:
95
℃
、
30 s
,
1
个循环;
95
℃
、
5 s
,
60
℃
、
10 s
,
40
个循环。目的基因相对表达量的计算方法为
2
−ΔΔ
C
t
,
β-actin
为内参,引物序列见表
1
。
2.5
Western
blotting
实验检测相关蛋白表达水平
检测
Huh7
细胞中
PTCH1
、
GLi1
、
SMO
、
SHH
、
Caspase-3
、
Bcl-2
和
cleaved Caspase-3
蛋白的表达,
以
β-actin
为内参。于
6
孔板中接种
Huh7
细胞(
5
×
10
6
个
/
孔),分组同“
2.2
”项下,各组分别加入
DMSO
和相应质量浓度的