常规基于固相载体法的核酸提取试剂盒通常以高浓度胍盐和蛋白酶k进行样本的裂解，然后以乙醇、异丙醇等一元醇作为结合液，并且后续的洗涤液中基本都含有乙醇成分。
图片来源：一种核酸提取裂解/结合液、核酸提取溶液体系及试剂盒的制作方法
在特定条件下，固相载体磁珠表面包被有如硅基、氨基或羧基等，或固相硅胶膜载体，依靠静电、疏水和氢键作用，可实现核酸与磁珠的特异性结合，通过若干次洗涤实现非特异性杂质、盐类等的去除，然后将核酸从固相载体上洗脱下来实现提纯。
磁珠、硅胶膜固相载体上一般会残留一定量的蛋白、大分子和盐类，清洗步骤有助于去除这些杂质。
杂质通常有两种清洗方式，因样本而异。通常分为两步洗涤，第一步会用中等浓度的离液盐和醇去除蛋白质，然后用乙醇清洗以除去盐类。
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常规的裂解液都含有去污剂 (如SDS、TritonX-100、NP-40、Tween20等) 和盐 (如Tris、EDTA、NaCl等)。
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a.去污剂的作用
破坏膜结构（细胞膜+核膜）；
使蛋白质变性+溶解；
破坏DNA与蛋白质间静电作用从而使二者分离。
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SDS作为一种强烈的蛋白变性剂，破坏其疏水作用打开氢键后能与之结合成蛋白质-sds复合结构。
b.盐的作用
提供合适的裂解环境（pH），如Tris；
抑制核酸酶对核酸的降解，如EDTA；
维持核酸结构稳定，如NaCl。
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c.离液盐
如异硫氰酸胍的存在有助于蛋白质的变性和裂解。胍盐能溶解蛋白质，彻底破坏核蛋白二级结构，从而尽可能的去除蛋白等杂质，获得高纯度的DNA。
离液盐同时对于核酸与硅基质的结合至关重要，
并且为增强两者的吸附强度，通常在结合阶段还需加入乙醇或异丙醇。
由于SDS和异硫氰酸胍难于互溶，而在结合阶段直接加入乙醇通过又会干扰SDS、异硫氰酸胍和蛋白的裂解效果，这些流程通常都是分步进行，比如先通过sds和蛋白酶k的初步裂解，然后加入含胍盐的溶液进一步裂解，再加入含醇的结合液进行结合依次完成。
d.蛋白酶k
裂解体系中还可能加入蛋白酶，利用蛋白酶将蛋白质消化成小的片段，促进DNA与蛋白质的分离，同时，也便于后续的纯化操作。
ProteaseK：蛋白酶，消化缠绕在DNA上的组蛋白等之类的东西；
BufferAL：含有高浓度的盐酸胍的裂解液，裂解白细胞和红细胞，盐酸胍是强的蛋白变性剂，也可以使缠绕在DNA上的蛋白变性，将纯的DNA释放出来。同时提供高盐离子环境，促使DNA特异性的吸附到硅胶膜上；
加乙醇的目的：破坏溶液中的DNA分子表面的水化层，有利于DNA吸附到硅胶膜上；此外，还可以在结合过程中加入适当的表面活性剂，如Tween-20，以减少非特异性吸附。
Buffer AW1：含高浓度的盐酸胍和氯化钠，洗掉硅胶膜上非特异性结合的蛋白；
Buffer AW2：成分基本是Tris-Hcl、水和乙醇，作用：洗掉硅胶膜上残留的盐酸胍、氯化钠等盐离子；
Buffer AE：10mM Tris-HCL（pH9.0）与1mM EDTA作用，将硅胶膜上吸附的DNA洗脱下来。
