专栏名称: 实验老司机
关注老司机,实验不死机。实验老司机分享生命科学实验知识,通过短视频、在线讲座、直播演示帮助新手实验操作者完成从0到1的入门学习。
目录
相关文章推荐
51好读  ›  专栏  ›  实验老司机

手把手教学|单碱基编辑技术原理及实验操作指南(下):细胞转染、编辑效率检测、注意事项

实验老司机  · 公众号  ·  · 2025-03-18 07:00

正文

哺乳动物细胞中可能的碱基编辑结果:初始编辑导致 U:G 错配。尿嘧啶 DNA 糖基化酶 (UDG) 对 U 的识别和切除启动碱基切除修复 (BER),从而导致恢复到 C:G 起始状态。BE2 和 BE3 会阻碍 BER,从而抑制 UDG。U:G 错配也由错配修复 (MMR) 处理,错配修复优先修复错配的缺口链。BE 3 缺口包含 G 的未编辑链,有利于将 U:G 错配解决为所需的 U:A 或 T:A 结果。 图片来 源:doi: 10.1038/nature17946。



上期链接: 手把手教学|单碱基编辑技术原理及实验操作指南(上):技术原理、靶点设计与sgRNA合成

实验步骤(接上)

3.2 细胞转染

3.2.1 细胞培养前处理

1. 培养基配置(以HEK293T为例):
  • DMEM高糖培养基 + 10% FBS + 1%青霉素/链霉素
  • 细胞传代:当汇合度达80-90%时,用0.25%胰蛋白酶-EDTA消化3min

2. 铺板参数:
  • 6孔板:2×10^5 cells/孔(转染前24h铺板)
  • 培养条件:37℃, 5% CO2, 湿度>90%


3.2.2 转染复合物制备(脂质体法)

1. 试剂配制(以Lipofectamine 3000为例):

  • Tube A(DNA混合液):

  • Tube B(脂质体混合液):

2. 孵育条件:
  • 将Tube A和Tube B分别涡旋5s
  • 将Tube B缓慢加入Tube A,轻柔吹打混匀
  • 室温静置15min(形成DNA-脂质体复合物)


3.2.3 转染

1. 吸除细胞培养基,加入1.5 mL新鲜培养基(不含抗生素)
2. 将250 μL转染复合物逐滴加入孔板,十字摇匀
3. 6h后更换为完全培养基(含抗生素)

4. 转染24h后:加入嘌呤霉素(终浓度1-2 μg/mL)

5. 每日观察细胞状态:

  • 正常:细胞贴壁良好,增殖减缓但无大面积死亡
  • 异常:若24h内细胞死亡率>90%,需降低筛选浓度

6. 筛选72h后:更换为正常培养基


3.2.4 终止培养与细胞收集

1. 转染后72小时(完成嘌呤霉素筛选),弃去培养基

2. 加入1×PBS(预冷至4℃)轻柔洗涤细胞2次(每次2 mL/孔,6孔板)

3. 加入0.25%胰蛋白酶-EDTA(含酚红)1 mL/孔,37℃孵育2-3分钟

4. 显微镜下确认细胞脱离后,加入2 mL完全培养基终止消化

5. 将细胞悬液转移至1.5 mL离心管,1000 rpm离心5分钟

6. 弃上清,细胞沉淀用200 μL PBS重悬备用


3.3 编辑效率检测

3.3.1 PCR扩增

1. 取适量细胞沉淀,使用试剂盒提取基因组DNA(如 QuickExtract DNA Extraction Solution(Epicentre)

2. 引物设计: 引物距离编辑位点至少50 bp(避免引物二聚体干扰)

示例引物:
Forward: 5'-CCTGTACCACAGCCTTAAGG-3'
Reverse: 5'-GTAGTCGGTGTCGGCTGATA-3'

3. 配制PCR反应体系(25 μL体系):

4. 扩增程序:

  • 预变性:95℃ 3min
  • 35个循环:95℃ 30s → 60℃ 30s → 72℃ 45s
  • 终延伸:72℃ 5min


3.3.2 T7E1酶切分析

1. 异源双链制备:

  • 混合PCR产物(200 ng)与等量野生型DNA
  • 95℃变性5min → 每分钟降温2℃至25℃

2. 酶切反应:

  • 反应体系:
  • 37℃孵育30分钟 → 加入6×Loading Buffer终止反应

3. 电泳分析: 2%琼脂糖凝胶,120 V电泳30分钟

切割条带比例估算公式:


3.3.3 Sa nger测序定量

1. PCR产物送测序,使用EditR(https://moriaritylab.shinyapps.io/editr_v10/)分析峰图

2. 计算公式:编辑效率=突变峰高度/(野生峰高度+突变峰高度)×100%


4 注意事项

4.1 sgRNA合成失败排查

  • 无连接产物:检查BsmBI酶切效率(电泳确认载体线性化)

  • 测序不匹配:重新设计引物避免回文结构


4.2 转染效率提升

低效处理:

  • 增加DNA总量至3 μg/孔(需保持BE:sgRNA=3:1)

  • 改用PEI转染(jetOPTIMUS®,Polyplus-transfection)

细胞毒性处理:

  • 若转染后24小时细胞圆缩率>30%,降低脂质体用量20%


4.3 多靶点共转染

  • 需控制总DNA量≤4 μg/孔

  • 不同sgRNA质粒需使用不同抗性筛选标记(如sgRNA1用puromycin,sgRNA2用hygromycin)


5 参考资料

  1. Komor, A. C., Kim, Y. B., Packer, M. S., Zuris, J. A., & Liu, D. R. (2016). Programmable editing of a target base in genomic DNA without double-stranded DNA cleavage. Nature, 533(7603), 420-424.







请到「今天看啥」查看全文