哺乳动物细胞中可能的碱基编辑结果:初始编辑导致 U:G 错配。尿嘧啶 DNA 糖基化酶 (UDG) 对 U 的识别和切除启动碱基切除修复 (BER),从而导致恢复到 C:G 起始状态。BE2 和 BE3 会阻碍 BER,从而抑制 UDG。U:G 错配也由错配修复 (MMR) 处理,错配修复优先修复错配的缺口链。BE
3 缺口包含 G 的未编辑链,有利于将 U:G 错配解决为所需的 U:A 或 T:A 结果。
图片来
源:doi: 10.1038/nature17946。
3.2 细胞转染
3.2.1 细胞培养前处理
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DMEM高糖培养基 + 10% FBS + 1%青霉素/链霉素
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细胞传代:当汇合度达80-90%时,用0.25%胰蛋白酶-EDTA消化3min
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6孔板:2×10^5 cells/孔(转染前24h铺板)
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3.2.2 转染复合物制备(脂质体法)
1. 试剂配制(以Lipofectamine 3000为例):
3.2.3 转染
1. 吸除细胞培养基,加入1.5 mL新鲜培养基(不含抗生素)
2. 将250 μL转染复合物逐滴加入孔板,十字摇匀
4. 转染24h后:加入嘌呤霉素(终浓度1-2 μg/mL)
5. 每日观察细胞状态:
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-
异常:若24h内细胞死亡率>90%,需降低筛选浓度
6. 筛选72h后:更换为正常培养基
3.2.4
终止培养与细胞收集
1. 转染后72小时(完成嘌呤霉素筛选),弃去培养基
2. 加入1×PBS(预冷至4℃)轻柔洗涤细胞2次(每次2 mL/孔,6孔板)
3. 加入0.25%胰蛋白酶-EDTA(含酚红)1 mL/孔,37℃孵育2-3分钟
4. 显微镜下确认细胞脱离后,加入2 mL完全培养基终止消化
5. 将细胞悬液转移至1.5 mL离心管,1000 rpm离心5分钟
6. 弃上清,细胞沉淀用200 μL PBS重悬备用
3.3 编辑效率检测
3.3.1 PCR扩增
1. 取适量细胞沉淀,使用试剂盒提取基因组DNA(如
QuickExtract DNA Extraction Solution(Epicentre)
)
2. 引物设计:
引物距离编辑位点至少50 bp(避免引物二聚体干扰)
Forward: 5'-CCTGTACCACAGCCTTAAGG-3'
Reverse: 5'-GTAGTCGGTGTCGGCTGATA-3'
3. 配制PCR反应体系(25 μL体系):
4. 扩增程序:
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35个循环:95℃ 30s → 60℃ 30s → 72℃ 45s
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3.3.2
T7E1酶切分析
1. 异源双链制备:
2. 酶切反应:
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37℃孵育30分钟 → 加入6×Loading Buffer终止反应
3. 电泳分析:
2%琼脂糖凝胶,120 V电泳30分钟
切割条带比例估算公式:
3.3.3
Sa
nger测序定量
1. PCR产物送测序,使用EditR(https://moriaritylab.shinyapps.io/editr_v10/)分析峰图
2. 计算公式:编辑效率=突变峰高度/(野生峰高度+突变峰高度)×100%
4 注意事项
4.1 sgRNA合成失败排查
4.2 转染效率提升
低效处理:
细胞毒性处理:
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若转染后24小时细胞圆缩率>30%,降低脂质体用量20%
4.3 多靶点共转染
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需控制总DNA量≤4 μg/孔
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不同sgRNA质粒需使用不同抗性筛选标记(如sgRNA1用puromycin,sgRNA2用hygromycin)
5 参考资料
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Komor, A. C., Kim, Y. B., Packer, M. S., Zuris, J. A., & Liu, D. R. (2016). Programmable editing of a target base in genomic DNA without double-stranded DNA cleavage. Nature, 533(7603), 420-424.