专栏名称: 北京生物结构前沿研究中心
北京生物结构前沿研究中心由清华大学与北京市科学技术委员会联合共建,成立于2018年,中心主任为施一公教授,执行主任为王宏伟教授。作为北京市构建高质量发展新范式的新型研发机构,中心致力于开展关键核心技术攻关和从0到1基础科学难题突破。
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Nature | 质体/寄生虫ATP/ADP转运蛋白:能量“搬运工”的分子密码

北京生物结构前沿研究中心  · 公众号  ·  · 2025-03-28 16:48

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细胞的正常功能和新陈代谢依赖于能量的持续供应。在真核细胞中,线粒体膜上的ATP/ADP转运器负责将ATP输出至细胞质以供细胞活动所需,并将ADP输入线粒体进行ATP再生。然而,细胞内寄生虫 (如沙眼衣原体、肺炎衣原体等) 由于自身能量代谢能力受损,无法独立合成足够的ATP,因此依赖宿主细胞提供的ATP来维持生存。这些寄生虫在其细胞膜上具有独特的ATP/ADP转运器,能够将宿主细胞中的ATP输入自身细胞,并将ADP输出至宿主细胞,从而实现能量的获取,这种现象被称为“能量寄生”。与专性细胞内寄生虫类似,植物和藻类的质体也含有类似的ATP/ADP易位子,它们通过介导ATP进入质体和ADP从质体输出,为质体内的淀粉和脂肪酸合成等代谢过程提供能量。由于这种类型的ATP/ADP转运体在人类细胞中缺乏同源物,且对专性细胞内寄生虫的生存具有关键作用,因此被认为是一种极具潜力的药物靶标。尽管质体/寄生虫型ATP/ADP转运体在致病性、进化以及合成生物学中具有重要意义,但其底物识别和转运的分子机制并不明确。


近日,中国科学院分子植物科学卓越创新中心 范敏锐 研究员、西湖大学生命科学学院 吴旭冬 研究员、复旦大学 张金儒 研究员和浙江大学 苏楠楠 研究员为共同通讯作者在 《Nature》 杂志上发表了题为 “Structure and mechanism of the plastid/parasite ATP/ADP translocator” 的研究,报道了拟南芥叶绿体ATP/ADP转运蛋白 (AtNTT1) 和肺炎衣原体ATP/ADP转运蛋白 (CpNTT1) 的高分辨率结构 (2.7–2.9 Å) ,包括apo状态、ATP结合和ADP/磷酸结合状态,显示出外向和内向不同构象,阐明了其结合和转运机制,这项研究为理解能量转移和核苷酸跨膜运输提供了重要的见解。


研究者通过冷冻电镜技术,首次捕获了 拟南芥质体ATP/ADP转运蛋白 (AtNTT1) 的三种关键构象 :Apo状态 (外向开放) :结构中心形成宽大的空腔。ATP结合状态 (内向部分开放) :ATP的磷酸尾部与多个带正电荷残基结合,关闭外侧门控,部分打开内侧通道。ADP/Pi结合状态 (内向部分开放) :ADP的β-磷酸折叠构象与ATP不同,且伴磷酸根 (Pi) 的协同结合,进一步缩小空腔,确保电荷平衡。


图1 拟南芥质体ATP/ADP转运蛋白(AtNTT1)的三种关键构象


拟南芥质体ATP/ADP转运蛋白与底物ATP和ADP/Pi的结合模式如图2所示,ATP结合于N端与C端结构域界面形成的囊腔中,其磷酸尾部通过静电作用与保守正电荷残基 (R134、K137、K156、K390、K489、K528) 结合,其中R134的胍基与ATP的三个磷酸基团直接作用 (2a-c) 。腺嘌呤部分通过π-π堆积 (Y493) 和疏水作用 (F123、L127、Y130、L285) 固定,核糖部分与V253和S254形成氢键。突变上述残基 (如R134K、Y493A) 导致ATP/ADP交换活性显著降低或完全丧失(图2g)。ADP的α、β磷酸基团呈折叠构象,与ATP的线性构象不同,但其磷酸尾部仍与相同正电荷残基结合。磷酸离子 (Pi) 位于ADP β-磷酸下方,与K528等残基相互作用(图2d-f)。磷酸的存在使ADP结合亲和力提高9倍 (Kd从11.9 μM降至1.3 μM) ,表明ADP与Pi的结合具有协同性。ATP单独或与Pi共存时未表现类似效应,凸显ADP转运依赖Pi共转运的特性(图2h-i)。此外,实验证明N282残基是维持ATP/ADP特异性的“分子开关”。


图2 AtNTT1的底物结合位点


进一步解析了肺炎衣原体ATP/ADP转运蛋白 (CpNTT1) 的结构,通过与植物来源的AtNTT1对比,揭示了其底物结合模式、构象变化及进化保守性。apo状态 (向外开放构象) (图3a,c):CpNTT1呈现典型的MFS (Major Facilitator Superfamily) 折叠,含12个跨膜螺旋 (TM1-TM12) ,分为N端结构域 (TM1-TM6) 和C端结构域 (TM7-TM12) 。底物结合腔面向细菌周质侧 (向外开放) ,腔内正电荷残基 (如K67、K309) 富集,利于结合带负电的ATP/ADP。ATP结合状态 (向内开放构象) (图3b,d,f,g):ATP结合诱导C端结构域向细胞质侧旋转,形成向内开放的构象,底物结合腔转向胞质侧。ATP的磷酸尾部被保守的正电荷残基 (如K67、R45) 稳定,但腺嘌呤与周围残基 (如Y413) 的π-π相互作用较弱,可能与底物释放前的预释放状态相关。CpNTT1的ATP结合位点与AtNTT1类似,但腺嘌呤结合口袋的构象更松散,如CpNTT1的N193 (对应AtNTT1的N282) 未与ATP形成氢键。从进化角度,质体ATP/ADP转运蛋白可能起源于衣原体祖先基因的水平转移 (内共生事件) ,结构相似性支持这一假说。


图3 肺炎衣原体ATP/ADP转运蛋白(CpNTT1)的结构与功能特征


那么ATP或ADP/Pi结合如何诱导NTT1在外向和内向构象之间转变呢?AtNTT1结构分析发现,在N和C结构域之间存在一个天冬氨酸-赖氨酸对 (TM1的D138和TM7的K390) ,在向外开放的构象中彼此相隔13.8 Å,而在向内的构象中形成一个盐桥 (距离3.4 Å) (图4e,f),用丙氨酸取代D138或K390严重损害了AtNTT1的转运活性(图4),对CpNTT1也获得了类似的结果,支持天冬氨酸-赖氨酸对在构象转变中的重要作用。N和C结构域主要作为刚体移动,伴随着一些TMs的轻微旋转,这与MFS转运体的摇杆开关交替进入机制一致。


图4 ATP/ADP转运体的构象变化


通过冷冻电镜解析了植物叶绿体与寄生虫ATP/ADP转运蛋白 (AtNTT1/CpNTT1) 的高分辨率结构,揭示其通过N/C端结构域旋转的“摇动开关”机制实现底物转运。关键残基 (如R134、Y493) 通过电荷与π-π作用识别ATP/ADP,保守天冬酰胺 (N282) 控制底物特异性,突变后可转运GTP/CTP。磷酸协同增强ADP结合,盐桥 (如D138-K390) 驱动构象变化。该研究阐明了能量寄生与内共生的分子基础,为抗寄生虫药物设计和合成生物学应用提供了关键依据。



原文链接

https://www.nature.com/articles/s41586-025-08743-3


供稿 | 张江涛

责编 | 囡囡

设计 / 排版 | 可洲


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