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研究一个基因的功能，我们知道可以对其过表达、敲除/干扰以及回补的方式进行验证，通过观察转基因材料的表型判断该基因是否具有某种功能，这些手段是研究基因功能的常规方法，那么除了这些常见的转基因材料之外，我们是否也可以将不同的基因组合进行转基因来实现更多的功能解读呢？答案是有的，下面是小远在阅读文献的过程中收集起来的一些比较有代表性的案例，分享给大家，希望给大家的科研带来一丝的灵感与启发。

提到基因之间的上下游关系，往往离不开遗传互作这个概念，遗传互作是指在遗传学中两个或多个基因/蛋白之间发生的相互作用，这种作用影响了它们各自的表型。当两个基因/蛋白互作时，它们联合作用的效果与各自单独作用的效果不同。这种互作可以是表型上的协同作用或拮抗作用，即两个基因/蛋白的效果联合起来可能表现为增强、减弱或产生新的表型。通过遗传互作验证一般可以确定基因/蛋白间的上下游关系。

如何进行遗传互作验证？一般是通过构建需要确定遗传互作关系的两个基因/蛋白的转基因遗传材料，例如双过表达材料或双突变体材料等，通过对转基因遗传材料与野生型材料表型的观察来判断两个基因/蛋白的上下游关系，甚至可以更进一步地判断调控关系。这种在遗传学上证明两个基因/蛋白间上下游关系的方法，小远在“ 辨清敌我，统一战线——确定基因上下游关系 ”“ 辨清敌我，统一战线——确定基因上下游关系（二） ”两篇公众号推文有详细介绍。

构建不同基因之间的转基因组合材料除了可以判断基因的上下游关系，也可以根据表型判断组合基因之间是否存在功能依赖/功能冗余，这里的功能依赖严格来说也属于判断基因上下游的范畴，但小远找到了一个较好的案例，所以介绍给大家。

2024年9月，中科院植物所乐捷团队在 The Plant Cel l 杂志上发表了一篇题为“The rice R2R3 MYB transcription factor FOUR LIPS connects brassinosteroid signaling to lignin deposition and leaf angle”的研究论文，该文章鉴定到一个非典型的R2R3-MYB转录因子FOUR LIPS（OsFLP），其在BR信号转导过程中与OsGSK1和OsBZR1协同调节水稻叶枕机械组织中的木质素沉积来维持水稻最适叶夹角。

水稻中9个GSK3/SHAGGY-like激酶中的OsGSK1至OsGSK4在BR信号转导中起核心调节作用。OsGSK1是水稻中最早发现的GSK3/SHAGGY-like基因，在叶片叶枕中高表达，提示其可能在叶片叶枕发育和叶片角度形成中起作用。

OsBZR1是BR信号转导的关键转录因子，并且在水稻OsGSKs下游的BR应答中起保守作用。

另外为了帮助大家理解，小远根据文章内容将OsGSK1、OsBZR1以及OsFLP之间的关系进行了展示（图1）。

图1 OsGSK1、OsBZR1以及OsFLP三者之间的调控关系。

作者前期在ChIP-seq数据获得的OsFLP靶基因信息中发掘到BR信号相关基因 OsGSK1 ，并对 OsGSK1 启动子区进行分析，发现存在OsFLP的结合位点，通过酵母单杂、EMSA、ChIP-qPCR等实验证实了OsFLP能够特异识别并结合 OsGSK1 启动子区的结合元件。因此，作者假设 OsGSK1 的表达可能受到OsFLP的反馈调节。

为了从遗传学上证实 OsGSK1 受OsFLP的反馈调控，作者通过CRISPR/Cas9基因编辑获得 Osgsk1 和 Osgsk1 Osflp-1 突变体。表型分析显示，与ZH11相比， Osgsk1 和 Osgsk1 Osflp-1 植株的植株结构较松散，这种松散的结构与 Osflp-1 突变体的植株结构相似（图2F-I）。定量分析表明， Osgsk1 的第三叶夹角略大于ZH11，但比 Osflp-1 窄得多。 Osgsk1 Osflp-1 双突变体的叶夹角介于 Osgsk1 和 Osflp-1 之间（图2J-N）。在成熟阶段，与 Osflp-1 的下垂旗叶表型相反， Osgsk1 呈现出与ZH11相似的直立旗叶表型。 Osflp-1 的下垂旗叶表型在双突变体 Osgsk1 Osflp-1 中大部分得到恢复，这表明 Osflp-1 旗叶角度的增加依赖于OsGSK1的抑制信号（图2O-S）。作者用间苯三酚-氯染色法检测了所有突变体叶片顶部第三叶片节的木质素沉积。与 Osflp-1 类似， Osgsk1 和 Osgsk1 Osflp-1 在叶枕正面和背面的厚壁组织细胞中均显示木质素沉积缺陷。

由于在 Osflp-1 突变体中没有观察到OsBZR1转录水平的显著变化，因此作者在ZH11、 Osflp-1 和 Osgsk1 植物中检测了OsBZR1的磷酸化水平，这对OsBZR1蛋白的稳定性很重要。免疫印迹分析显示 Osflp-1 中磷酸化的OsBZR1（OsBZR1-P）较多。磷酸化蛋白与非磷酸化蛋白的相对比值由ZH11的1.08增加至 Osflp-1 的1.48。相比之下， Osgsk1 植物中观察到相反的趋势，相对比值下降至0.8，这与OsGSK1在调节OsBZR1磷酸化中的已知作用一致（图2T）。综上所述，OsFLP整合BR信号以维持适当的叶夹角，将OsBZR1介导的BR信号传递给木质素生物合成，并通过OsGSK1-OsBZR1上的反馈回路调节BR信号。

这个案例中表型的观察有点复杂，也有点绕，为了理解清楚其中的关系，大家可以多看几遍结果描述。

2022年8月，密苏里大学张舒群团队在 Journal of Integrative Plant Biology 杂志上发表了一篇题为“Overlapping functions of YDA and MAPKKK3/MAPKKK5 upstream of MPK3/MPK6 in plant immunity and growth/development”的研究论文，该文章揭示了三个MAPKKK成员YDA、MAPKKK3及MAPKKK5在植物生长发育与免疫过程中的功能冗余。

丝裂原活化蛋白激酶（MAPK）级联是所有真核生物中重要的信号转导模块。一个典型的MAPK级联至少有一个MAPK（或MPK），一个MAPK激酶（MAPKK，也称为MKK或MEK）和一个MAPKK激酶（MAPKKK，也称为MKKK或MEKK）。功能冗余或部分功能重叠的多个成员可能出现在级联的同一层。作为对刺激的响应，MAPK级联中最顶端的激酶MAPKKK（s）的激活导致下游MAPKK（s）的磷酸化活化，被激活的MAPKK随后磷酸化并激活MAPK，MAPK能够磷酸化多种下游底物，包括转录因子、蛋白激酶、其他酶和结构蛋白，从而导致细胞生理学的变化。

两个拟南芥MAPKKs：MKK4和MKK5，在植物生长与发育的多个过程中都位于MPK3/MPK6的上游。YODA（YDA），也被称为MAPKKK4，已被证明是YDA-MKK4/MKK5-MPK3/MPK6 MAPK级联中的MAPKKK，并且在植物生长发育中起信号转导的作用。

据报道，在植物免疫中，MAPKKK3和MAPKKK5是MKK4/MKK5-MPK3/MPK6模块的上游MAPKKKs，形成了由MAPKKK3/MAPKKK5-MKK4/MKK5-MPK3/MPK6组成的完整的MAPK级联。

根据以上信息推测不同的MAPKKKs，如YDA和MAPKKK3/ MAPKKK5，可能位于相同的MKK4/MKK5-MPK3/MPK6模块的上游，分别在植物生长/发育和免疫信号传导中形成两个独立的MAPK级联。然而，在响应病原体相关的分子模式（PAMPs）的 mapkkk3 mapkkk5 双突变体中，仅观察到MPK3/MPK6激活的部分丧失，这表明存在额外的MAPKKK（s），可能与MAPKKK3和MAPKKK5在植物免疫中功能冗余（若不存在功能冗余的基因发挥类似的作用，那么响应PAMPs的 mapkkk3 mapkkk5 双突变就可以观察到MPK3/MPK6激活的全部丧失）。

为了探究YDA和MAPKKK3/MAPKKK5在植物免疫和生长发育方面是否存在功能冗余，作者尝试两种独立的方法以生成 mapkkk3 mapkkk5 yda 三突变体：（1）将 mapkkk3 mapkkk5 双突变体与杂合的 yda /+敲除突变体杂交；（2）在 mapkkk3 mapkkk5 双突变背景下，利用CRISPR/Cas9敲除 YDA 。这两种方法都无法得到 mapkkk3 mapkkk5 背景下 yda 敲除纯合突变体，表明 mapkkk3 mapkkk5 背景下敲除 yda 可能是致命的，最终作者利用第二种方法得到了 mapkkk3 mapkkk5 背景下 yda 的弱突变体（YDA功能部分缺失的突变体），记为 mapkkk3 mapkkk5 yda -Δ42（ yda -Δ42表示 YDA 缺失了42个氨基酸）。

为了测试 mapkkk3 mapkkk5 yda -Δ42三突变体中MPK3和MPK6在防御反应中的激活作用，作者用flg22（flg22多肽是细菌鞭毛蛋白N端的一段保守性极高的区域，能够诱导植物天然的免疫反应）对Col-0、 mapkkk3 mapkkk5 双突变体、 mapkkk3 mapkkk5 yda -Δ42三突变体幼苗分别处理不同的时间，并收集样品测定MPK3和MPK6的磷酸化。如图5A所示，在双 mapkkk3 mapkkk5 突变背景下，YDA功能的部分缺失进一步降低了MPK3/MPK6在flg22作用下的磷酸化，这表明YDA与MAPKKK3和MAPKKK5存在功能冗余。

这里给大家总结一下，如果一个基因 X 与基因 Y 存在功能冗余，那么 XY 的双突变体或双过表达材料，相对于 Y 的单突变体或单过表达材料，其表型或功能在 Y 基因的基础上具有累加作用。 对于功能冗余，这里小远还为大家介绍一种方法，具体的文献案例由于篇幅原因就不展示了，大家感兴趣可以自己去查阅相关的文献，具体的方法是两个基因 A 和 B ，那么利用 A 基因的启动子驱动 B 基因的CDS，如果利用该载体转化A的突变体材料可以回补 A 的功能缺失，那么 A 和 B 存在功能冗余（ A 基因的启动子替换成35S或 B 基因自身的启动子也可以证明）。

在研究基因的功能时，因为一些特殊的原因或者基因功能的特殊性，并不需要整株过表达、敲除以及干扰，或者不需要在植物的整个生育周期过表达、敲除以及干扰，针对这些情况就需要构建特殊部位（一般需要利用组织特异性启动子）或特殊时期的转基因材料（一般需要利用时间诱导启动子）。

这部分内容可参考之前的推文“ 作物改良与诱导型启动子和组织特异性启动子更配 、 植物诱导型启动子大盘点（一） ”，里面有许多相关的案例。

2020年10月，美国宾夕法尼亚大学Doris Wagner团队在 N ature C ommunications 杂志上发表了一篇题为“TERMINAL FLOWER 1-FD complex target genes and competition with FLOWERING LOCUS T”的研究论文，作者在确定了 LFY 是TFL1和FT双重调控的靶点后，进一步研究了TFL1-FT在该位点拮抗的机制（TFL1与FT具有相反的功能，FT促进生殖期的开始和花的形成，而TFL1作为开花抑制因子，决定了顶端分生组织转变为花序分生组织的时间和花序的分枝模式，从而促进营养发育和分枝命运）。

FT和TFL1是小的可移动蛋白，它们与转录调控有关，但没有DNA结合域。生化和遗传学研究表明，FT通过14-3-3蛋白与bZIP转录因子FD进行物理相互作用，TFL1也发现了类似的相互作用。因此，FT和TFL1需要与FD结合才能结合至对应的调控元件上去。

LFY 第二外显子bZIP结合位点的突变强烈降低了早期和幼花原基中报告基因的表达（图4），这表明bZIP基序可能是这些花原基中 LFY 上调所必需的，这个上调可能是通过FT结合bZIP基序导致的。先前的研究表明LFY并不是生殖期FT的直接靶标。由于延迟生殖期开始的组成型突变，如 ft ，间接地延迟了向花形成的转换，作者希望在生殖期特异性地耗尽FT，以测试FT是否促进了 LFY 的表达。为此，作者使用了一个最小的 FT 启动子（p4kbFT），该启动子仅在长日照生长植物生长12天后的部分叶片和茎中活跃。作者将p4kbFT与先前表征的FT特异性人工microRNA(Schwab et al., 2006)融合。在产生的条件 ft 突变体（p4kbFT:amiRFT）中，生殖期的开始并没有延迟（图5a），但花的形成发生了明显地延迟，同时在该突变体中 LFY 的表达也没有上调（图5）。另外作者通过其它的一些实验进一步证明了FT-FD通过 LFY 第二外显子的bZIP结合位点直接激活 LFY 的表达。

上面介绍了利用组织特异性启动子或诱导启动子构建转基因材料的相关方法，但有可能利用这些启动子无法按照预期启动目的基因的表达，那么是什么原因导致目的基因无法表达呢？下面即将讲到的文献案例给出了一种可能的答案，由于其研究思路也值得我们学习借鉴，所以也一起介绍给大家！

2024年5月，西北农林科技大学袁黎团队在 Journal of Integrative Plant Biology 杂志上发表了一篇题为“AtRKD5 inhibits the parthenogenic potential mediated by AtBBM ”的研究论文，该研究发现AtRKD5是卵细胞中调节 AtBBM 表达的抑制因子，缺失AtRKD5能够提高 AtBBM 在卵细胞的异位表达并诱导孤雌生殖得到单倍体后代。

未受精的卵细胞发育成胚胎的过程被称为孤雌生殖，该方式是无融合生殖的重要组成部分，无融合生殖有助于固定杂种优势、推动育种事业的发展。关于无融合生殖的更多介绍可见之前的推文“ 袁隆平爷爷心系的“一系法”，能否实现？ 、 杂交作物如何通过自交获得克隆种子？ ”

AtBBM 基因（ BABY BOOM ）编码AP2/ERF转录因子，调控拟南芥早期胚胎发育，具有将营养生长向生殖生长转变的潜能。 Ps ASGR - BBML （ Ps 是非洲狼尾草的缩写） 与 AtBBM 具有高度同源性，并且 PsASGR - BBML 在玉米、水稻和小米等单子叶植物的卵细胞中异位表达可诱导孤雌生殖并产生单倍体后代。然而拟南芥中 AtBBM 不能在卵细胞直接表达，双子叶植物中 BBM 诱导孤雌生殖的机制尚未有明确的解析。为了解析该机制，作者进行了一系列的探究。

作者首先对 At BBM 启动子活性进行了研究，发现 AtBBM 启动子具有胚胎特异活性，而卵细胞和花粉中没有检测到活性。

随后，作者尝试使用卵细胞特异性启动子 DD45 在卵细胞中异位表达 AtBBM ，即驱动 AtBBM 基因组序列融合绿色荧光蛋白（GFP）基因的表达（ AtBBMgeno - GFP ）。然而，在转基因植物卵细胞中未检测到荧光信号，表明 AtBBMgeno 不能在卵细胞中异位表达（图7A）。同时作者换用另外一个启动子 ES1 再次证明了该结论（图7B）。使用 DD45 和 ES1 启动子驱动 AtBBMgeno 在卵细胞中的表达均未能实现其异位表达，因此推测卵细胞中存在抑制因子阻止AtBBM表达以及发挥孤雌生殖潜能。

在不改变氨基酸序列的情况下，根据大肠杆菌密码子偏好，将 AtBBM 的编码序列改变为类似于远亲大肠杆菌 BBM 基因（ EcoliBBM ）的编码序列，并将 EcoliBBM 基因在拟南芥中异位过表达，在转基因植株中，85.71%（12/14）的卵细胞可检测到荧光，这一发现表明 EcoliBBM 在卵细胞中的异位表达可以降低 BBM 表达的潜在抑制作用，从而使 AtBBM 在卵细胞中的异位表达成为可能。另外通过表型分析以及育性分析，在没有受精的情况下胚胎发育的开始证实了 BBM 基因诱导孤雌生殖的能力。

之前的研究结果表明，水稻 OsBBM1 可以在拟南芥卵细胞中异位表达。为了进一步消除At BBM 异位表达的障碍，在 OsBBM1 和 AtBBM 基因之间进行了节段性替换。基于AP2结构域的保守性，作者将 OsBBM1 和 AtBBM 分别分为a、b、c三个片段，设计了四种替代方案对 AtBBM 基因进行片段替代（图9）。结果发现 OsbcAta-BBM （第四种组合方式）在拟南芥卵细胞的异位表达水平升高，能够诱导孤雌生殖的发生。通过其它实验进一步分析发现， AtBBM 基因的c段可能主要负责抑制 AtBBM 诱导的卵细胞孤雌生殖。

为了确定 BBM 基因的潜在抑制因子，作者以 BBM 基因的c段为诱饵进行酵母单杂交（Y1H）筛选。结果发现转录因子AtRKD与 AtBBM 的c段特异性结合，而a段和b段没有这种相互作用。作者通过双荧光素酶实验结合转录组数据证明AtRKD5抑制 AtBBM 的表达。

为了在体内验证AtRKD5对 AtBBM 的抑制作用，作者在 rkd5-3 突变体的卵细胞中异位过表达 AtBBMcds 。26.09%（12/46）转基因植株的卵细胞可检测到荧光，高于野生型 AtBBM 直接异位表达的效率（图10A、B），表明 AtRKD5 突变可增强 AtBBM 在卵细胞中的异位表达，并且诱导孤雌生殖得到单倍体后代，实现双子叶植物中利用内源 BBM 基因诱导孤雌生殖。

图10 在 atrkd5 突变体中， AtBBM 的异位表达启动孤雌生殖并诱导单倍体后代(Liu et al., 2024)。（A）在 rkd5-3 突变体中， AtBBMcds 使用 pDD45 启动子在卵细胞中异位表达，表达水平高于Col-0植物；（B）异位表达的效率被量化为卵细胞衍生的荧光植株与转基因植株总数的比值（n）；（C）在野生型植物中，去雄后2天，胚珠中卵细胞和中心细胞的形态保持不变；（D、E）在 atrkd5 突变体中，去雄后2天， AtBBM 在卵细胞中的异位表达触发了卵细胞的独立发育，导致合子样结构的形成；（F）在野生型植物中，授粉后2天，中心细胞和卵细胞分别发育为胚乳和胚；（G、H）在 atrkd5 突变体中，授粉后2天， AtBBM 在卵细胞中的异位表达导致孤雌胚胎（G）的形成和双胚胎（H）在胚珠中的发生；（I） atrkd5 突变体卵细胞中 AtBBMcds 异位表达后代的育性分析。单倍体植物表现出明显的不育表型；（J） atrkd5 突变体卵细胞中 AtBBMcds 异位表达后代的流式细胞术分析；（K） atrkd5 突变体卵细胞中异位表达 AtBBMcds 子代的免疫荧光研究。染色体用抗着丝粒组蛋白CENH3的抗体标记。

常规的基因功能验证就好比我们上学时单独学习的加减乘除，这对于大家来说都不是什么难事，而小远今天给大家介绍的思路与方法就是将单独的加减乘除进行组合运算。至于如何组合，对于验证基因的上下游关系以及功能冗余模式一般是比较固定的，但其它的方式就需要根据大家自己的实验目的进行组合，小远给大家挑了几个相对典型的案例进行了讲解，虽然不多，但对于激发大家的灵感应该是够了，大家有更好的案例也可以分享给小远，大家一起学习与进步!