广东工业大学栾天罡教授和李心砚副教授团队在
Environment International
上发表了题为“
Rap1 and
mTOR signaling pathways drive opposing immunotoxic effects of structurally
similar aryl-OPFRs, TPHP and TOCP
”的论文。论文第一作者为广东工业大学
2024
级博士生赵碧琳,通讯作者为广东工业大学李心砚副教授
。
芳香基有机磷阻燃剂(
aryl-OPFRs
)由于优异的阻燃和增塑性能,作为溴代阻燃剂(
PBDEs
)的替代品广泛用于家具、塑料、电子产品等行业。
TPHP
和
TOCP
作为常见的
aryl-OPFRs
,具有与
PBDEs
相似的物理化学性质,表现出长距离迁移和生物累积特性等,并在多种环境介质和人体样本中被检出。其结构与著名免疫毒物有机磷农药相似,提示其可能具备免疫毒性。研究发现,
TPHP
暴露与免疫相关疾病(如干燥综合征)发病率相关,并能增加嗜酸性粒细胞数量;
TOCP
抑制淋巴细胞增殖。我们的前期研究表明,
TPHP
和
TOCP
对
THP-1
巨噬细胞表现出相反的免疫毒性效应:
TPHP
抑制吞噬和粘附功能,表现为免疫抑制毒性;而
TOCP
诱导免疫应激反应,但其具体机制仍不明确(
Li. etal, ES&T, 2020, 54, 8900-8908
)。免疫系统在维持自我耐受的同时,需对外界刺激作出适当反应,以保持体内稳态。然而,单一组学研究难以全面揭示其复杂的跨组学机制。此外,免疫细胞通过动态调节胞内代谢物,以满足不同功能和状态下的代谢需求,代谢物的变化又反过来影响免疫功能的调控。因此,本研究通过整合转录组和代谢组学,系统探讨
TPHP
与
TOCP
对
THP-1
巨噬细胞免疫毒性作用的机制。研究结果为理解结构差异如何导致不同免疫反应提供重要见解,并为有机磷阻燃剂的风险评估和监管策略的制定提供科学依据。
两种结构相似的物质表现出相反的毒性效应,通常有两种可能的机制:
1)
对同一通路进行相反调控,导致不同的效应;
2)
通过干扰不同的通路,导致不同的表型。针对这两种情况,本研究采用了两种分析策略来探讨
TPHP
和
TOCP
的相反免疫毒性效应:
1
)分析它们对共享的差异基因(
DEGs
)、差异代谢物(
DEMs
)及通路的干扰模式;
2
)探究物质特异性干扰的通路,尤其是与免疫功能相关的部分
。
转录组结果表明,尽管二者共享
486
个
DEGs
,其上调和下调模式相似(图
1A
)。
KEGG
富集分析显示,前
15
个富集通路中
12
个为共享通路,且前五个通路完全一致(图
1B
)。
TPHP
和
TOCP
均显著干扰
DNA
合成和修复,表现为嘧啶代谢、
DNA
复制、细胞周期等通路的紊乱。此外,
TPHP
和
TOCP
均破坏了
THP-1
巨噬细胞的代谢稳态,涉及萜类骨架生物合成、类固醇代谢、叶酸代谢和嘧啶代谢等通路。综上所述,转录组数据并不支持假设
1
。
图
1. TPHP
和
TOCP
引起的转录失调
基于转录组数据中
TPHP
与
TOCP
的代谢扰动潜力(图
1B
),我们进行了非靶向代谢组学分析。
TPHP
与
TOCP
共享
18
个代谢物,且变化模式相似(图
2A
)。
3′-AMP
显著增加,腺苷琥珀酸和鸟嘌呤等嘌呤核苷酸合成中间产物失调,强调核苷酸合成与
DNA
修复紊乱。此外,
TPHP
和
TOCP
均显著限制
THP-1
巨噬细胞的能量储存,表现为显著降低的
ATP
水平,升高
ADP
,影响
TCA
循环底物合成(柠檬酸、
L-
谷氨酰胺等,图
2A
、
B
)。
KEGG
分析显示,
TCA
循环底物合成的相关通路受损(图
2B
)。总体而言,
TPHP
与
TOCP
在核酸合成和能量代谢上的双重失调一致,否定了假设
1
。
图
2. TPHP
和
TOCP
引起的代谢失调
基于整合组学分析提供的全面视角,我们结合
DEGs
和
DEMs
进行了
KEGG
通路富集分析(图
3A
)。结果显示,尽管
TPHP
和
TOCP
在特定基因和代谢物调控上存在差异,但在共享通路中,整体通路趋势一致,完全排
除了假设
1
。因此,我们转向第二种策略,检索
TPHP
或
TOCP
特有的干扰通路,特别关注与免疫功能相关的部分。结合
DEGs
和
DEMs
的表达模式,筛选出与免疫表型一致的通路。具体来说,对
TPHP
而言为
Rap1
信号通路(图
3B
),
TOCP
则为
mTOR
信号通路(图
3C
)。值得注意的是,单独分析转录组或代谢组时未发现
Rap1
信号通路的干扰,突显整合多组学方法在全面理解机制中的重要性
。
图
3.
转录
-
代谢联合分析
Rap1
通过
GTP
结合激活,调控整合素激活和肌动蛋白动态,进而调控吞噬和粘附过程。
q-PCR
分析结果显示,
TPHP
处理后,
RAP1A
和
RAP1B
的转录水平以及下游靶蛋白
TLN1
和
IGTB3
(编码整合素)的表达未见显著改变(图
4B-E
)。然而,
PFN
以及
ACTB
(编码肌动蛋白单体)的表达显著下降(图
4F
和
G
)。代谢组学数据显示,
GTP
水平显著降低,支持
Rap1
激活受损的可能性。外源性补充
GTP
实验表明,
TPHP
显著减少
GTP
结合的
Rap1
,且
GTP
补充有效逆转这一效应(图
4H
)。补充
GTP
还缓解
PFN
和
ACTB
的下降(图
4I
、
J
)。总体而言,
TPHP
引起的
THP-1
巨噬细胞免疫抑制,特别是吞噬和黏附能力的抑制,主要源于
GTP
的可用性下降,导致
Rap1
激活受损,进而下调其下游靶标
PFN
和
ACTB
。
图
4. Rap1
信号通路在
TPHP
诱导的免疫抑制毒性中的作用
mTOR
通过其复合物
mTORC1
和
mTORC2
调节细胞黏附和吞噬功能(图
5A
)。
TOCP
处理显著上调
mTOR
激活相关基因(
SLC3A2
、
WNT2B
、
RICTOR
等),提示
mTOR
被激活。
q-PCR
结果显示,
mTOR
及其组分(
RAPTOR
、
SIN1
、
RICTOR
等)和下游分子(
S6K
、
4EBP1
、
PKC
、
RHOA
)均显著上调(图
5B-J
)。此外,
S6K
、
RHOA
、
PKC
磷酸化水平升高(图
5K-M
),进一步确认
mTOR
激活。使用
mTOR
抑制剂雷帕霉素后,
S6K
、
RHOA
、
PKC
磷酸化显著降低(图
5O-Q
),表明
TOCP
通过激活
mTOR
通路,促进其下游蛋白磷酸化,诱导免疫应激毒性
。
图
5. mTOR
信号通路在
TOCP
诱导的免疫应激毒性中的作用
本研究阐明了两种结构相似的芳基类有机磷阻燃剂(
TPHP
和
TOCP
)诱导的相反免疫毒性效应的分子机制。通过单一转录组和代谢组分析,我们发现二者均严重扰乱了核苷酸合成和能量代谢,并导致
THP-1
巨噬细胞
ATP
耗竭。通过将转录组学、代谢组学与通路验证实验相结合,我们发现
TPHP
通过降低
GTP
水平抑制了
Rap1
的激活,并进一步抑制了
Rap1-PFN-ACTB
轴,进而抑制了吞噬和黏附功能。
TOCP
激活了
mTORC1
和
mTORC2
,导致下游蛋白
S6K
、
RHOA
和
PKC
的磷酸化水平升高,增强了吞噬和黏附过程。此项研究为
TPHP
和
TOCP
引起的免疫毒性的分子机制提供了新见解,深化对结构相似化合物如何差异性影响免疫功能的理解
。
本项目得到了国家自然科学基金青年项目、面上项目以及国家重大科研仪器研制等项目的资助
。